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Puede acceder a ellos pulsando sobre las imágenes.
Aunque todavía no dispongo de demasiadas imágenes, salvo las relacionadas con el olivo, al haberme dedicado todo este tiempo al proyecto "Olivos al microscopio", creo que lo más indicado es crear esta página y que en el transcurso del tiempo se vaya llenando de contenidos.
Dividiremos estos contenidos en tres apartados principales: Olivos al microscopio, imágenes correspondientes a preparaciones diversas obtenidas según se describe en el documento sobre materiales y métodos, y finalmente imágenes de preparaciones de piel de anfibios y reptiles (*).No obstante lo anterior del primero de los apartados solo incluiremos una pequeña muestra y un enlace a la página correspondiente.
Olivos al microscopio |
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Olivos al microscopio |
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Preparaciones diversas. |
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| Hueso de pollo | ||
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| Riñón de pollo | ||
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| Tejido adiposo pollo | ||
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Piel de anfibios y reptiles.(*) |
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| Sapo | ||
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| Tritón | ||
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NOTA (*).-
Estas muestras corresponden a experiencias realizadas para mi tesis hace muchos años. Fueron procesadas para su visualización al microscopio electrónico, así que es de suponer que la fijación e inclusión son las ideales. Como preparé muchos más bloques de los necesarios he pensado reducirlos a preparaciones mediante lijado y colocar en esta página las imágenes obtenidas. Para ver los detalles del procesado o visualizar imágenes de mayor calidad puede acceder directamente a mi tesis.
Durante mi etapa docente he podido comprobar que en la mayoría de los centros hay microscopios de calidad variable, pero prácticamente no existen los medios adecuados para la realización de preparaciones. Hace unos años inicié el ciclo "Olivos al microscopio" dentro del proyecto "Olivar y escuela". En él nos planteábamos, entre otros objetivos, poner a disposición del profesorado técnicas sencillas que permitan la realización de preparaciones microscópicas, practicamente sin ningún medio complejo. Ultimamente he creado un espacio inmersivo asociado a este proyecto en el que puede pasearse por una galería en la que se exponen las preparaciones.
En la actualidad estoy empezando a obtener algunos resultados con las tinciones y he creído conveniente añadir esta sección a mi web personal. En ella iré añadiendo algunas imágenes y los enlaces a las páginas de los proyectos correspondientes.
 Tricoma de hoja de olivo. (Acceso al proyecto) |
 Mesocarpio de una aceituna. (Acceso al proyecto) |
 Hoja de olivo. (Acceso al proyecto) |
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 Hoja de olivo. (Acceso al proyecto) |
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 Sección transversal de un hueso de pollo. (Enlace al proyecto) |
 Sección longitudinal de un hueso de pollo (Enlace al proyecto) |
Espero que esta web sirva a tod@s aquell@s compañer@s que se encuentren en la situación en la que yo me he visto durante muchos años.
Realmente todavía estoy en fase de pruebas respecto a este apartado, por lo que no hay demasiadas imágenes correspondientes a las técnicas a las que se hace referencia al final de esta página. Las imágenes actuales corresponden a secciones realizadas directamente en huesos sin procesar ni incluir. Espero que antes de acabar este año tenga materiales preparados.
El proceso en este caso ha sido el siguiente:
Para poder observar al microscopio cualquier material, éste tiene que ser muy fino, ya que si el grosor excede a algunas décimas de milímetro la muestra será totalmente opaca cuando la observemos con luz transmitida (por transparencia) que es como se realizan la mayoría de las observaciones.
Esto no representa un problema cuando se trata de organismos unicelulares o de tejidos muy finos, como puede ser el epitelio de cebolla, pero si queremos observar la estructura histológica de órganos de animales o plantas, como puede ser una hoja, o un trozo de hígado o riñón, deberemos obtener secciones finas de dichos órganos.
Para estas observaciones los fragmentos de órganos deben tener la consistencia y disposición adecuadas que permita su manip
ulación y corte.
Todos sabemos lo dificil que puede ser cortar un grano de pìmienta por la mitad, pero si la pimienta forma parte de un salchichón podremos cortarla en varias rebanadas sin apenas dificultad.
Con las preparaciones de fragmentos de órganos ocurre algo parecido, es decir, deberemos incluirlas en un material adecuado que permita su manipulación y corte. Solo existe un pequeño problema respecto al ejemplo citado, y es que no solo deberemos incluir nuestra muestra en el medio elegido, sino que tendremos que conseguir que dicho medio impregne en su totalidad a la muestra. Si seguimos con el ejemplo no solo tendriamos que meter la pimienta en el salchichón, sino que deberíamos ser capaces de meter también el salchichón en la pimienta.
Esto, que a priori nos resultaría imposible, es lo que describiremos a continuación.
El proceso completo consta de cinco fases:
1. Fijación
2. Deshidratación
3. Inclusión
4. Preparación de bloques
5. Realización de las preparaciones
La fijación es un proceso que pretende mantener los materiales biológicos con el aspecto que tienen en el ser vivo. Si nosotros rompemos un huevo, la clara y la yema se extenderán y no se parecerá en nada al aspecto que tenía antes de romperlo, pero si pelamos un huevo duro, el aspecto será mucho más parecido al original. En este caso hemos realizado una fijación física, por calor. Algunas sustancias químicas consiguen efectos parecidos alterando las estructuras celulares mucho menos que las fijaciones físicas. Realmente la única fijación física que se emplea en la actualidad es la congelación, y solo cuando la necesidad de examinar las muestras rápidamente es importante, como puede ser durante el transcurso de una operación quirurgica.
Entre los fijadores químicos, uno de los más utilizados en microscopía óptica es el formol, que puede estar acompañado por otros como el alcohol o el ácido acético. Suele utilizarse disuelto en alguna solución amortiguadora de pH (tampón), en nuestro caso utilizaremos formol al 4% sin tamponar, es decir rebajaremos al 10% el formol comercial que viene al 40%.
El tamaño de las muestras es importante, ya que a mayor tamaño, mayor dificultad de penetración del fijador y del resto de sustancias que utilizaremos en el proceso. Aunque en función de la necesidad pueden utilizarse tamaños mayores, nosotros utilizaremos muestras entre 2 y 4 mm.
La materia viva contiene una cantidad elevada de agua. Mediante todo el proceso pretendemos sustituir ese agua por el medio de inclusión, encontrándonos con que los medios utilizados no son miscibles con el agua, y por tanto no sería posible la sustitución. Por ejemplo, si queremos conservar alimentos sumergidos en aceite, el aceite impedirá que el alimento esté en contacto con el exterior, pero no penetrará en el alimento, y mucho menos en las células que lo constituyen.
Pero el problema no es insoluble, simplemente se trata de buscar alguna sustancia que sea miscible con el agua y con el medio de inclusión. En la mayoría de los casos es necesario recurrir a dos sustancias.
En este caso utilizaremos alcohol. Si sumerjo las muestras en alcohol, al cabo de cierto tiempo gran parte del agua del interior de la muestra habrá sido sustituida por alcohol, y el alcohol se habrá rebajado un poco con el agua, por lo que tendremos que dar varios pasos hasta conseguir que el agua prácticamente haya desaparecido y en su lugar tendremos alcohol.
El problema ahora es que la mayoría de los medios de inclusión tampoco son solubles en alcohol.
Ahora llega el momento de meter la pimienta en el salchichón y el salchichón en la pimienta.
Igual que en el paso anterior, deberemos sustituir, en este caso el alcohol: que se encuentra entre, y en el interior de las células; por otra sustancia que sea miscible con el medio de inclusión. Dependiendo del medio de inclusión se utilizan diferentes disolventes orgánicos, en nuestro caso utilizaremos acetona.
Después de varios pasos tendremos nuestra muestra, en la que toda el agua original habrá sido sustituida por acetona, siendo ahora el momento de introducir el medio de inclusión.
Tradicionalmente para microscopia óptica se utiliza la parafina y para microscopía electrónica las resinas epoxi, ya que las resinas son más duras y permiten hacer cortes mucho más finos. No debemos olvidar que para microscopía óptica deberíamos cortar nuestro grano de pimienta en 300-400 rebanadas, y eso no es nada comparado con las 30000-40000 que deberiamos cortar para microscopía electrónica.
Como en nuestro caso no dispondremos de aparatos de corte especializados (microtomos), sino que pretendemos reducir al tamaño adecuado mediante lijado de la muestra, necesitaremos emplear resina aunque sea para observar las preparaciones con un microscopio escolar.
Las resinas epoxi, que se encuentran fácilmente en el comercio, contienen dos envases (tubos o jeringas) de aproximadamente el mismo volumen, que endurecen en un tiempo variable, pero que el mejor de los casos sería insuficiente para permitir la impregnación completa de la muestra por esa razón vamos a recurrir a la resina de poliéster.
El poliéster tiene varias ventajas (es barato, solo hay que añadir unas gotas de catalizador y puede polimerizar por calor, casi sin catalizador), y algunos inconvenientes, el más importante que el medio se contrae ligeramente al polimerizar. Este inconveniente es el que ha hecho que se desestime su uso para microscopía electrónica, pero con los aumentos a los que nosotros trabajaremos carece de importancia.
Como la resina de poliéster es bastante más viscosa que la acetona es conveniente realizar el proceso de embebido con mezclas de resina/acetona cada vez más concentradas. Finalmente dejaremos un largo periodo, normalmente toda la noche, en resina pura, para que ésta ocupe la totalidad de la muestra.
Una vez que las muestras están totalmente embebidas en resina tenemos que crear los bloques.
En primer lugar prepararemos la resina añadiéndole unas gotas de catalizador. Es preferible quedarse corto, ya que siempre podremos acabar de polimerizar con calor. Si echamos demasiado esta resina no tendrá tiempo de penetrar en la muestra y no solidificará en el interior del tejido.
Una vez preparada la resina con el catalizador la verteremos a los moldes, insertando a continuación un papel con la numeración adecuada que nos permita después identificar la muestra. Debe escribirse a lápiz, ya que la tinta podría correrse con el poliéster, siendo aconsejable escribir por los dos lados del papel. Una vez añadida la etiqueta, añadiremos las muestras, asegurándonos de que se hundan, y esperaremos a que solidifique el bloque. Si transcurridas 24 horas el bloque sigue sin polimerizar, o está un poco pegajoso, lo meteremos en el horno a 50-60ºC.
En mi caso introduzco los moldes en recipientes herméticos de vidrio, para evitar olores indeseados, que puedan afectar a los alimentos que cocinemos después,
Realización de las preparaciones:Cuando hayamos desmoldado los bloques los cortaremos con una segueta o sierra de marquetería para separar las muestras.
En mi caso las voy numerando con el número de bloque y una letra para poder seguir las muestras de forma individual.
El paso siguiente es tallar el fragmento de forma que la cara en la que aparece la muestra quede totalmente plana. Esto se consigue con lijas de agua de grano grueso (80-160).
Ahora puliremos esa cara con lijas de granos cada vez más finos. Podemos llegar hasta el 7000, pero si no tenemos lijas tan finas con el 3000 o incluso el 2000 será suficiente.
Cuando la muestra esté pulida Ia pegaremos, por esa cara, a un porta con resina epoxi.
Ya solo nos queda lijar con lijas gruesas hasta que tenga 1 o 2 mm, y después con lijas medias y finas hasta conseguir el grosor deseado.
Las imágenes nos muestran el aspecto al principio y al final del proceso, así como una tabla de equivalencias entre número de lija y tamaño de grano.
Descarga del documento PDF que recoge los materiales y métodos en detalle. Acceso a las micrografías obtenidas.
En los cursos "2011-12 y 2012-13 copaboré con los CEPs de Sevilla y Jerez de la Frontera en la difusión del Proyecto PRIMAS ...
El nombre "PRIMAS " corresponde a las siguientes iniciales: Promoting Inquiry in Mathematics and Science, es decir, Aprendizaje por investigación en clase de matemáticas y ciencias.
Se trata por tanto de "fomento del aprendizaje por investigación (IBL, en inglés) en matemáticas y ciencias, siendo su ámbito de aplicación la comunidad europea. El aprendizaje por investigación es la modalidad que más fácilmente despierta el interés de los alumnos en las matemáticas y las ciencias. Asimismo supone un refuerzo para la adquisición de competencias importantes como la resolución de problemas, el aprendizaje autónomo y la exploración de nuevas áreas del conocimiento.
Los siguientes enlaces dan acceso a un documento obtenido en la página del proyecto y a diversas acciones que han supuesto mi contribución al proyecto.
Nuestra contribución (el proyecto era compartido por un compañero de matemáticas (José Rubio) y yo. Nos encargamos de dos bloques, uno formado por la presentación del proyecto y el módulo de trabajo colaborativo, y otro sobre preguntas motivadoras y problemas no estructurados.
A continuación se incluiyen enlaces a las presentaciones eleboradas y a los guiones de las mismas.
Módulos 1 (Aprendizaje por investigación) y 5 (Trabajo colaborativo).
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Guión Presentación Módulo PRIMAS. |
Módulo Trabajo Colaborativo PRIMAS. |
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Guión Trabajo Colaborativo 3 2013. |
Presentación Trabajo Colaborativo 3 2013. |
Módulos 2 (Problemas no estructurados) y 4 (Haciendo preguntas).
